隨著測序技術(shù)的飛速發(fā)展，單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)也已成為實驗室常規(guī)工具之一。然而，研究人員在試圖應(yīng)用單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組技術(shù)的時候也面臨著令人困惑的選擇，比如說選擇哪種建庫測序平臺，使用哪種分析方法以及后續(xù)的生物信息學(xué)分析方法的選擇等等。

此前，來自人類細(xì)胞圖譜聯(lián)盟的研究人員進(jìn)行了一項綜合性多中心研究，通過使用包含人類、小鼠和狗細(xì)胞的參考樣本，比較了 13 種單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序流程的異同。結(jié)果發(fā)現(xiàn)不同流程在量化基因表達(dá)和識別細(xì)胞類型層面存在著顯著差異。

近日，美國羅馬琳達(dá)大學(xué)基因組學(xué)中心的研究團(tuán)隊在 Nature Biotechnology 發(fā)表了題為“A multicenter study benchmarking single-cell RNA sequencing technologies using reference samples”的研究性文章，研究人員設(shè)計了一項綜合性的多中心研究，用以評估技術(shù)平臺、樣品組成和生物信息學(xué)方法（包括預(yù)處理、歸一化和批次效應(yīng)校正）的影響，并在后為科研人員解決科學(xué)問題的技術(shù)平臺和生物信息方法的結(jié)合提供了實踐指導(dǎo)。

文章發(fā)表在 Nature Biotechnology

該研究使用了四種測序平臺：10x Genomics，F(xiàn)luidigm C1, Fluidigm C1 HT 和 Takara Bio ICELL8；測序工作分別由四個研究中心完成：Loma Linda University（LLU），the National Cancer Institute（NCI），the US Food and Drug Administration（FDA）和 Takara BioUSA（TBU）。樣本層面，他們使用了有兩個特征明顯的參考細(xì)胞系：來自同一供者的乳腺癌細(xì)胞系（樣本 A）和“正常”B 淋巴細(xì)胞系（樣本 B）。然后使用 3  '或全長單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序方法對 30,693 個單細(xì)胞進(jìn)行了測序，共生成了 20 個數(shù)據(jù)集。

針對產(chǎn)生的這 20 個數(shù)據(jù)集，研究人員對不同的數(shù)據(jù)預(yù)處理方法、數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化方法、批次效應(yīng)矯正方法等進(jìn)行了評估。

圖 1.  研究總體設(shè)計示意圖。來源：Nature Biotechnology

測序深度與檢測基因數(shù)的關(guān)系

首先，研究人員對序列深度與檢測到的基因數(shù)量的關(guān)系進(jìn)行了評估。正如預(yù)期的那樣，隨著測序深度的增加，檢測到的基因數(shù)逐漸升高并趨于穩(wěn)定。另外，對于癌細(xì)胞（樣本 A）和 B 淋巴細(xì)胞（樣本 B），隨著測序深度的增加，每個細(xì)胞檢測到的基因數(shù)量迅速增加，特別是 Fluidigm C1 平臺。然而，對于全長測序技術(shù)（C1_LLU 和 ICELL8），在 10 萬次讀取后，飽和速率較慢，在相同的測序深度增加情況下，與基于 3’的測序技術(shù)相比，額外能夠檢測到的基因較少。

圖 2.  不同測序平臺檢測的基因數(shù)及與測序深度的關(guān)系。來源：Nature Biotechnology

數(shù)據(jù)預(yù)處理方法的比較

對基于 UMI（Unique Molecular Identifier）的單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)，他們比較了三種預(yù)處理方法：Cell Ranger 3.1（10x Genomics）、UMI-tools 和 zUMIs。結(jié)果顯示，三種方法在識別細(xì)胞數(shù)量和每個細(xì)胞檢測到的基因數(shù)量層面都存在差異。不過，Cell Ranger V3 是靈敏的細(xì)胞條形碼識別方法，UMI-tools 和 zUMIs 可以過濾大多數(shù)低基因或轉(zhuǎn)錄表達(dá)的細(xì)胞，但每個細(xì)胞內(nèi)可檢測到更多的基因。

對非基于 UMI 的單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)，他們比較了另外三種預(yù)處理方法：featureCounts、kallisto 和 RSEM。這些數(shù)據(jù)預(yù)處理流程包括去除低質(zhì)量測序數(shù)據(jù)、基因組比對和基因計數(shù)。結(jié)果表明，三個不同的預(yù)處理方法檢測到的基因數(shù)量的差異比較大。kallisto 在全長轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)中發(fā)現(xiàn)了每個細(xì)胞中更多的基因。此外，基于 Fluidigm C1 HT 3’測序方法產(chǎn)生的數(shù)據(jù)中，kallisto 方法檢測到的每個細(xì)胞的基因數(shù)與其它兩個管道生成的基因序列有顯著差異。

圖 3.  數(shù)據(jù)預(yù)處理方式對檢測到的基因數(shù)量的影響。來源：Nature Biotechnology

不同批次矯正算法的比較

如上所述，數(shù)據(jù)集之間的差異可能來自技術(shù)層面或生物因素，針對這些技術(shù)層面帶來的差異，在進(jìn)行數(shù)據(jù)分析時是需要矯正的，否則將會影響結(jié)論。研究者對七種校正批次效應(yīng)的算法進(jìn)行基準(zhǔn)測試：Seurat version 3、fastMNN、mutual nearest neighbors（MNN）、Scanorama、BBKNN、Harmony、limma 和 ComBat。

他們通過四種不同的樣本組合評估這些算法的性能，組合 1 包含所有單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)集，包括混合和純合數(shù)據(jù)集；組合 2 只包含了乳腺癌細(xì)胞系數(shù)據(jù)；組合 3 分別對 B 細(xì)胞系來源數(shù)據(jù)進(jìn)行評估；組合 4 中，數(shù)據(jù)由將 5% 或 10% 的乳腺癌細(xì)胞（樣本 A）加入到 B 淋巴細(xì)胞（樣本 B）中，用 10x Genomics 平臺橫跨兩個中心測序得到。

結(jié)果顯示，在去除批次效應(yīng)和從 B 淋巴細(xì)胞中分離乳腺癌細(xì)胞方面，BBKNN、fastMNN 和 Harmony 是有效的；Seurat V3 是將不同批次的相似細(xì)胞聚集在一起的方法之一，特別是對乳腺癌細(xì)胞，但也會存在過度校正的現(xiàn)象，比如將兩種高度不同的細(xì)胞類型融合在一起。另外，當(dāng)只分析來自 10x 平臺的數(shù)據(jù)時，Scanorama 既能清晰地分離不同的細(xì)胞，又能很好地將相似的細(xì)胞組合在一起。

圖 4.  比較分析不同工具的批次矯正效果。來源：Nature Biotechnology 

綜合上述的分析結(jié)果，研究人員對這些預(yù)處理方法和算法進(jìn)行了綜合排序，如圖 5 所示，基于 UMI 的數(shù)據(jù)可以用文中所列的任何方法進(jìn)行預(yù)處理，而 kallisto 則更適用于全長轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)的預(yù)處理。

在跨中心數(shù)據(jù)集，特別是當(dāng)數(shù)據(jù)集中存在大量不相似細(xì)胞時，BBKNN 表現(xiàn)先進(jìn)，而 limma 和 ComBat 在兩種類型的細(xì)胞的跨平臺、跨中心分離中表現(xiàn)差。Seurat V3、fastMNN 和 Harmony 都能很好地混合來自不同平臺和位點的生物相同或相似樣本的單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)。

圖 5.  生物信息學(xué)指標(biāo)的性能排名。來源：Nature Biotechnology

綜上所述，該研究比較分析了 6 種單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)預(yù)處理流程、8 種歸一化方法和 7 種批次校正算法，結(jié)果表明，單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)之間的確存在批次效應(yīng)，不過，跨中心和不同平臺的數(shù)據(jù)差異可以通過適當(dāng)?shù)挠嬎惴椒ㄟM(jìn)行糾正。同時，該研究也強(qiáng)調(diào)了選擇適合的測序技術(shù)平臺和分析數(shù)據(jù)算法的重要性。如下圖所示，他們也根據(jù)本研究結(jié)果為科研人員選擇適合解決科學(xué)問題的技術(shù)平臺和生物信息方法的結(jié)合提供了實踐指導(dǎo)。

圖 6.  好的分析推薦方案。來源：Nature Biotechnology

參考文獻(xiàn)： 

1.Chen, W., Zhao, Y., Chen, X. et al. A multicenter study benchmarking single-cell RNA sequencing technologies using reference samples. Nat Biotechnol (2020).

2.Haghverdi, L., Lun, A. T. L., Morgan, M. D. & Marioni, J. C. Batch efects in single-cell RNA-sequencing data are corrected by matching mutual nearest neighbors. Nat. Biotechnol. 36, 421–427 (2018).

3.Butler, A., Hofman, P., Smibert, P., Papalexi, E. & Satija, R. Integrating single-cell transcriptomic data across diferent conditions, technologies, and species. Nat. Biotechnol. 36, 411–420 (2018).

轉(zhuǎn)載：測序中國（侵刪）

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